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國立臺中科技大學 商業設計系碩士班 蕭嘉猷教授所指導 林威志的 剪輯軟體優使性之研究-以多機位剪輯為例 （2018），提出威力導演壓縮影片關鍵因素是什麼，來自於優使性、多機位剪輯、鏡頭語言、非線性剪輯。

而第二篇論文長庚大學 化工與材料工程學系 陳志平所指導 賴欣柔的 具有抗沾黏與促進神經修復功能之神經導管開發與應用 （2017），提出因為有 抗沾黏、周邊神經修復、神經導管、神經組織工程、許旺細胞、他克莫司的重點而找出了 威力導演壓縮影片的解答。

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剪輯軟體優使性之研究-以多機位剪輯為例

為了解決威力導演壓縮影片的問題，作者林威志 這樣論述：

近年來，隨著影像晶片的蓬勃發展，攝影機功能不斷推陳出新。現今，剪輯方式從線性到非線性，更從單機進到多機剪輯，而拍攝設備也已全面從類比變成數位。為了完整記錄當下的實況，單機拍攝已無法滿足現今的需求，因多機拍攝除了能確保重要時刻鏡頭不會錯過，多機位剪輯創造出單機位所無法實現的視覺表現，多角度的視覺讓觀看者的視覺疲憊感必定會減少。目前，非線性剪輯功能日益強大，多軌道與多機位編輯技術更是日臻成熟。 決定從數位影片剪輯軟體作為研究內容，除了預估多機位拍攝已是未來趨勢之外，也假設多機剪輯軟體在設計上符合優使性的規準。目前業界較常使用的剪輯軟體有微軟公司為主的Canopus Edius、Premiere

、威力導演…等；而Mac作業系統的剪輯軟體則有：Final Cut Pro、DaVinci Resolve…等。研究生目前對微軟作業系統較有涉略，因此，本研究將以微軟作業系統為主的Canopus Edius為研究的工具。 另外，本研究採用比較研究法與專家訪談法做為主要的研究方法。透過實際拍攝一場活動記錄，比較多機(三機)拍攝的差異，再利用目前業界常用的剪輯軟體-Canopus Edius與Premiere進行後製剪輯，盼提供未來想參與多機位剪輯的人，能對其使用介面有所了解。藉由雙機拍攝與剪輯流程的呈現，提供於多機拍攝前與後製剪輯時會遇到的問題，如：攝影機架設處、拍攝的影片畫框大小、多軌影片無

法對位、聲音與畫面無法一致…等)，並針對剪輯軟體各項功能介面的優使性做評估。多機位拍攝可透過鏡頭語言分析，從不同角度、不同場景詳實記錄現場，再利用非線性剪輯系統的多軌道多機位編輯技術，將不同角度所拍攝的素材整後，具有視角靈活、畫面豐富之優點。 在與幾位專家進行半結構訪談後，綜合他們的意見，提出：電腦配備、輸出效能、特效、多機位剪輯、字幕、使用介面、功能性等七大方向結合優使性做出比較，針對多機位拍攝與剪輯軟體間的對照與評估，提供給拍攝者參考單機與多機位剪輯軟體的差異，進而證實，多機拍攝搭配多機位剪輯雖然考驗著剪輯師的功力，但的確能夠增加影片數位內容之豐富性。而一套提供多機位剪輯的軟體，若能符合

優使性的規準，必定能受到使用者的青睞。

具有抗沾黏與促進神經修復功能之神經導管開發與應用

為了解決威力導演壓縮影片的問題，作者賴欣柔 這樣論述：

目錄指導教授推薦書論文口試委員會審定書致謝 ………………………………………………………………...iii摘要 ………………………………………………………………ivAbstract ………………………………………………………………vi目錄 ……………………………………………………………….viii圖目錄 ………………………………………………………………xv表目錄 ………………………………………………………………xx材料支架縮寫表 xxi第一章 導論 11.1 前言 11.2 研究動機與目的 21.3 實驗設計及架構

3第二章 原理及文獻回顧 42.1 神經系統 (NERVE SYSTEM) 42.1.1 中樞神經系統 (Central Nervous System, CNS) 52.1.2 周邊神經系統 (Peripheral Nervous System, PNS) 62.1.3 神經元 (Neuron) 72.1.4 神經纖維 (Nerve fibers) 92.1.4.1 有髓鞘神經纖維 (myelinated nerve fiber) 102.1.4.2 無髓鞘神經纖維 (unmyelinated nerve fiber) 112.1.5

神經纖維的傳導速度 112.2 周邊神經損傷 142.2.1 神經損傷的分類 142.2.1.1 Seddon 分類法 142.2.1.2 Sunderland 分類法 162.2.2 神經元受傷後之變化 172.2.3 神經元受傷後之復原 192.2.4 術後沾黏 (post-surgical adhesion) 之預防 212.3 神經導管 232.4 組織工程技術 252.4.1 組織工程技術 – 支架 262.4.1.1 凍膠 (Cryogel) 272.4.1.2 明膠 (Gelatin) 282.4.1

.3 透明質酸 (Hyaluronic Acid, HA) 292.4.1.4 氧化石墨烯 (Graphene Oxide) 302.4.2 組織工程技術 – 細胞 312.4.2.1 許旺細胞 (Schwann cell) 322.4.3 組織工程三要素 – 訊息因子 322.4.3.1他克莫司 (Tacrolimus, FK506) 33第三章 實驗材料及方法 343.1 實驗設備及器材 343.2 實驗藥品與抗體 353.3 實驗步驟與方法 373.3.1 雙層神經導管製備 373.3.1.1 明膠/透明質酸凍膠 (

G, GH) 的製備 373.3.1.2 含有 graphene oxide 的明膠/透明質酸凍膠 (GO, GOH)的製備 383.3.1.3 含有 graphene oxide/FK506 的明膠/透明質酸凍膠 (GF, GFH) 的製備 393.3.2 藥物傳遞研究 413.3.2.1 藥物附載量測定 413.3.2.2 體外藥物釋放 423.3.3 凍膠細胞支架之特性分析 433.3.3.1 掃描式電子顯微鏡 (SEM) 之分析 433.3.3.2 孔隙度 (Porosity) 測定 443.3.3.3 膨潤率及吸水能力測試

443.3.3.4 X 光繞射儀 (XRD) 分析 453.3.3.5 熱重量分析儀 (TGA) 分析 453.3.3.6 體外降解測試 463.3.3.7 循環壓縮測試 473.3.4 體外細胞培養實驗 (In Vitro) 483.3.4.1 細胞培養 483.3.4.1.1 許旺細胞 (Schwann cell) 483.3.4.1.2 纖維母細胞 (Fibroblast) 493.3.4.2 Schwann cell 種植於神經導管 493.3.4.3 細胞形態學分析 503.3.4.3.1 掃描式電子顯微鏡 503.3

.4.3.2 雷射共軛焦螢光顯微鏡 503.3.4.4 細胞活性分析 513.3.4.5 細胞增生分析 523.3.4.5.1 分解液的配置 523.3.4.5.2 螢光染劑的配置 533.3.4.5.3 DNA 含量測試 533.3.4.6 細胞遷移分析 533.3.4.7 基因表現分析 543.3.4.7.1細胞RNA之萃取與反轉錄cDNA 543.3.4.7.2 即時定量PCR (Quantitative Real-Time PCR, qPCR) 553.3.4.8. 免疫螢光染色 (Immunofluence, IF) 分析

573.3.5 體內動物實驗 (In Vivo) 583.3.5.1 大鼠坐骨神經開創及材料植入 583.3.5.2 感覺測試與評估 593.3.5.3 行為測試與評估 593.3.5.3.1 Rota-rod 測試 593.3.5.3.2 步態分析 (Gait analysis) 603.3.5.4 肌電圖檢查評估 (electromyography, EMG) 613.3.5.5 材料觀察及組織採樣 613.3.5.6 組織切片染色 623.3.5.6.1 Hematoxylin-Eosin Stain (H&E stain)

623.3.5.6.2 Toluidine blue stain 623.3.5.6.3 ImmunohistoChemical stain (IHC stain) 623.3.5.7 腓腸肌萎縮分析 (Muscle Atrophy) 64第四章 結果與討論 654.1 雙層凍膠支架之物性分析 654.1.1 凍膠的合成 654.1.2 熱重量分析儀分析 (TGA) 664.1.3 X光繞射儀分析 (XRD) 684.1.4 掃描式電子顯微鏡 (SEM) 分析 694.1.5 孔隙度測試 724.1.6 膨潤率及吸水能力測試

734.1.7 體外降解測試 744.1.8 循環壓縮測試 764.2 藥物傳遞研究 774.2.1 藥物對細胞活性之影響 774.2.2 藥物對細胞遷移之影響 794.2.3 藥物吸附率及負載率 814.2.4 體外藥物釋放測定 824.3 體外細胞培養實驗 (IN VITRO) 844.3.1 許旺細胞之 DNA 含量測試 844.3.2 許旺細胞之型態學分析 854.3.2.1 掃描式電子顯微鏡 (SEM) 854.3.2.2 雷射共軛焦螢光顯微鏡 (Confocal) 864.3.3 細胞遷移之分析

884.4.4 即時定量PCR (Quantitative Real-time PCR, qPCR) 894.4.5 免疫螢光染色 (Immunofluence, IF) 964.4 體內動物實驗 (IN VIVO) 1004.4.1 遠交系大白鼠之神經移植及重建後照片 1004.4.1 感覺測試與評估 1014.4.2 行為測試與評估 1024.4.2.1 Rota-Rod 測試分析 1024.4.2.2 步態分析 (Gait Analysis) 1044.4.3 肌電圖檢查評估 (EMG) 1064.4.4 腓腸肌萎縮分析 108

4.4.5 組織切片染色 1094.4.5.1 H&E 染色分析 1094.4.5.2 Toluidine Blue 染色分析 1124.4.5.3 免疫組織染色分析 (IHC stain) 113第五章 結論 117第六章 參考文獻 120圖目錄圖 1 1實驗基本架構圖 3圖 2 1神經系統的介紹 7圖 2 2神經元的結構 8圖 2 3神經元的分類 9圖 2 4神經纖維的結構 10圖 2 5 神經損傷的分類 16圖 2 6瓦勒式變性 (Wallerian degeneration) 示意圖 19圖 2

7神經導管的種類 24圖 2 8組織工程三大要素 26圖 2 9明膠 (Gelatin) 之分子結構 29圖 2 10透明質酸 (HA) 之分子結構 30圖 2 11石墨烯及氧化石墨烯的攜帶功能 31圖 2 12他克莫司 (Tacrolimus, FK506) 之分子結構 33圖 3 1 FK506濃度之檢量線圖 41圖 3 2 三點式循環壓縮示意圖 47圖 3 3各項 SFI 之測量參數 61圖 4 1 HA與BDDE 交聯之反應機制[40] 66圖 4 2凍膠支架之重量損失分析 67圖 4 3凍膠支架之重量損失微分分析

68圖 4 4 不同凍膠材料之XRD 分析 69圖 4 5在凍膠支架上內層明膠 (Gelatin) 凍膠之表面型態。 70圖 4 6在凍膠支架上內層明膠 (Gelatin) 凍膠之側面型態。 71圖 4 7 雙層凍膠導管之側面型態。 71圖 4 8不同凍膠支架之孔隙率 72圖 4 9不同凍膠支架之澎潤率 73圖 4 10不同凍膠之吸水能力測試 74圖 4 11不同凍膠支架之膠原酵素降解圖 75圖 4 12不同凍膠支架之溶菌酶降解圖 76圖 4 13不同凍膠支架之循環壓縮測試分析 77圖 4 14 許旺細胞在不同天於不同 FK506

濃度之細胞活性測試。 78圖 4 15 纖維母細胞在不同天於不同 FK506 濃度之細胞活性。 79圖 4 16 許旺細胞在不同時間點於不同 FK506 濃度之遷移影響。 80圖 4 17 許旺細胞於不同時間點在不同FK506濃度下所遷移的剩餘面積。 80圖 4 18 GO之藥物吸附率與藥物負載率關係圖，n=3。 82圖 4 19 藥物在材料支架中的釋放量曲線, n=3 83圖 4 20 藥物於各時間點所釋放的濃度，n=3 83圖 4 21 許旺細胞於不同纖維支架之細胞 DNA 含量，n=3。 85圖 4 22 許旺細胞在凍膠內層上第3天及第7天

之細胞型態。 86圖 4 23 許旺細胞 (Schwann cell) 在凍膠支架上培養第3天及第7天之 DAPI / Phalloidin 雙螢光染色細胞型態分析 88圖 4 24 許旺細胞遷移之面積分析 89圖 4 25 許旺細胞培養於不同凍膠支架之Sox10 基因表現 93圖 4 26許旺細胞培養於不同凍膠支架之Sox2 基因表現 93圖 4 27 許旺細胞培養於不同凍膠支架之Egr2 基因表現 94圖 4 28許旺細胞培養於不同凍膠支架之MBP 基因表現 94圖 4 29 許旺細胞培養於不同凍膠支架之NGF 基因表現 95圖 4 30 許

旺細胞培養於不同凍膠支架之MAG 基因表現 95圖 4 31 許旺細胞培養於不同凍膠支架第七天之細胞核及S100 的免疫螢光染色 98圖 4 32 許旺細胞培養於不同凍膠支架第七天之細胞核及MBP 的免疫螢光染色 98圖 4 33 許旺細胞培養於不同凍膠支架第七天之細胞核及NGF 的免疫螢光染色 99圖 4 34 許旺細胞培養於不同凍膠支架第七天之細胞核及NF200 的免疫螢光染色 99圖 4 35 不同手術過程八周後的照片 100圖 4 36 利用威力導演分析影片並記錄縮回時刻 102圖 4 37 大鼠在Rota-Rod 上之測試示意圖 103

圖 4 38 手術後八周大鼠在Rota-Rod 上的運動測試結果分布圖 103圖 4 39 實驗動物於術後第八週的步跡測試步態圖 105圖 4 40 不同組別在第二、四、六、八周之坐骨功能指數結果 106圖 4 41 大鼠於手術後八周之肌電圖 107圖 4 42 腓腸肌之神經肌肉複合動作電位的振幅 (Amplitude) 之結果 107圖 4 43 不同組別於術後八周之腓腸肌宏觀圖 108圖 4 44 不同組別於術後八周之肌肉重量百分比 109圖 4 45 手術後第八周神經組織縱切面之 H&E 染色 110圖 4 46 不同組別之神經橫切面之示意

圖。 110圖 4 47 正常神經之各個神經節段的 H&E 染色。 111圖 4 48 縫合神經之各個神經節段的 H&E 染色。 111圖 4 49 具有 GFH (Cellular) 神經之各個神經節段的 H&E 染色。 111圖 4 50 不同組別之各個神經截斷橫切面之Toluidine Blue 染色。 112圖 4 51不同組別之各個神經截斷橫切面之 S100 染色。 113圖 4 52不同組別之各個神經截斷橫切面之 NF200 染色。 114圖 4 53不同組別之各個神經截斷橫切面之 NGF 染色。 115圖 4 54不同組別之各個神經

截斷橫切面之MBP 染色。 116表目錄表 2 1 神經傳導速度的分類 13表 3 1 所配置之HA 溶液之百分比 38表 3 2 FK506 Elisa Kit 內涵物品 43表 3 3 不同螢光染劑之最大激發光譜 (EX) 及釋放光譜 (EM) 之波長 51表 3 4 即時定量PCR 所使用之 Primer 56表 4 1 材料中各含量百分比 76表 4 2 不同組別對於感覺神經的測試結果 102

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