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節能水車之研發

為了解決energy efficiency計算的問題，作者邱崇瑋 這樣論述：

養殖用增氧機是養殖魚池中必要的設備，目前最常見的增氧機是葉輪式增氧機，其轉速固定，無法視魚池內之溶氧狀況調整增氧機之增氧效果及用電，本研究以葉輪式增氧機為基準，擬研發可以隨時調整水車用電功率和增氧效果的機構，能因應魚池溶氧的變動自動調整水車轉速，且能調整電能配置在增氧和造成水流上的比例，達到節能增氧且能創造最適水流分布的目的。本研究測試水車轉速和用電量的關係，發現轉速降低一半約可節省用電量75%。本研究在4分地的蝦池測試水車數量和水流分布的關係，以Flow 3D軟體模擬池塘的水流，並實地測試水流情況，發現使用8至14台水車時會使池塘外圍的水流過快，影響池塘操作。本研究設計三種不同的機構，比較

三種方式的效果，包括：(1) 設計水車副輪與葉輪轉軸之升降機構，以變頻器調整水車轉速，在高轉速(60 Hz)時提高葉片，減少水車葉片之入水深度，低轉速(25 Hz)時降低葉片，增加入水深度，測試其用電量，(2) 改良前述設計，以浮性導流板與轉臂機構調整葉片入水深度，測試其用電量和增氧效率(SAE)，(3) 設計水流導板，減少產生水花的阻力，以增加增氧效率。試驗結果顯示，安裝水車葉片副輪結合葉輪升降機構可以在高速運轉時提高葉片，達成設計目標，但是耗電太大而不實用；導流板與轉臂機構可改善前述問題，亦可以在高速運轉時節省用電，但是沒有提昇增氧效率；水流導板可以達到省電效果，但同樣沒有提升增氧效率。本

研究再檢討水車葉片外形，設計新型葉片，以3D曲面外形減少入水阻力並調整擴大水花分布的空間，以3D列印製作葉片後測試效果，發現可以使水車運轉時所產生的水花範圍增加，可提昇增氧效率約20%並降低水流速度約33%。新型葉片在低速時仍可以造成池塘水流，在高速時可增加增氧效率而不會使水流過快，可以取代傳統葉片而提高增氧效率，若能配合智慧型增氧控制器，可成為智慧型節能增氧水車，估計可節省約47%之用電量。

探討PLOD2和P4HA1基因在人類大腸直腸癌HCT116細胞中缺氧誘導的轉譯調控

為了解決energy efficiency計算的問題，作者李鴻宣 這樣論述：

指導教授推薦書口試委員會審定書誌謝 iii中文摘要 ivAbstract vi目 錄 viii圖目錄 xi表目錄 xiii第一章：研究背景 11.1 大腸的構造功能、癌症發生及統計 11.2 大腸直腸癌的篩檢、 診斷以及治療 21.3 Mammalian target of rapamycin protein kinase 的組成及對轉譯的調控 41.4 缺氧的定義；HIF-1α及HIF-2α在缺氧下的表現 61.5 大腸癌細胞在缺氧下的基因調控機制 9第二章：研究目標 13第三章：實驗方法與材料 163.

1 實驗方法 163.1.1 細胞培養 （Cell culture) 163.1.2 西方墨點法 (Western blot) 163.1.3 聚合酶連鎖反應 (PCR) 173.1.4 全細胞RNA萃取與RT-PCR 173.1.5 即時定量聚合酶連鎖反應 (quantitative real-time PCR ; q RT-PCR) 183.1.6 多核糖體圖譜分析及蔗糖梯度沉降 (Polysome profiling and sucrose sedimentation) 193.1.7 RNA 膠體電泳 213.1.8 RNA免疫沉澱法

(RNA immunoprecipitation) 223.1.9 Lentivirus-mediated knockdown 反轉錄病毒knockdown 233.1.10 Plasmid construct 質體建構 243.1.11 Reporter assay 253.1.12 Transfection & knockdown 263.1.13 統計方法 (statistic analysis) 273.2 實驗材料 28第四章：實驗結果 324.1 各目標基因在HCT116及293T細胞中缺氧下的蛋白質表現 324.2

各目標基因在HCT116及293T細胞中缺氧下的轉錄表現 334.3 HCT116及293T細胞在缺氧下的轉譯表現 334.4 目標基因HCT116及293T細胞中缺氧下的轉錄效率 364.5 探討RBM4與各目標基因mRNA之間的關係 374.6 探討RBM4與各目標基因mRNA在缺氧環境下的結合能力 384.7 探討ALDOC、P4HA1和PLOD2三者的UTR在缺氧下對轉譯的調控表現 40第五章：討論 425.1探討目標基因在HCT116及293T細胞內蛋白質、轉錄以及轉譯效率之間的關係 425.2探討RBM4與各目標基因之結合力與在缺氧下

的活性表現 445.3探討目標基因的untranslated region在缺氧細胞中的活性表現 46第六章：圖表 49第七章：參考文獻 67第八章：附錄 70圖目錄圖 一、利用西方墨點法觀察目標基因在缺氧下的變化 49圖 二、利用西方墨點法觀察各目標基因在HT-29細胞株之表現 50圖 三、探討目標基因經過缺氧處理後在HCT116及293T細胞中的變化 51圖 四、透過核糖體圖譜分析在HCT116細胞中的轉譯表現 52圖 五、透過核糖體圖譜分析在293T細胞中的轉譯表現 53圖 六、探討HCT116細胞經過hypoxia處理後目標基

因的轉譯效率變化 54圖 七、探討293T細胞經過hypoxia處理後胞內目標基因的轉譯效率變化 55圖 八、探討各目標基因在HCT116及293T細胞經過缺氧處理後的轉譯效率 56圖 九、利用免疫沉澱法探討各目標基因與RBM4之間的作用 57圖 十、利用西方墨點法驗證免疫沉澱法之結果 58圖 十一、利用免疫沉澱法觀察在各目標基因在經過缺氧處理後與RBM4結合之能力 59圖 十二、利用西方墨點法驗證過缺氧處理後免疫沉澱法之結果 60圖 十三、利用dual luciferase reporter assay觀察ALDOC、P4HA1和PLOD2三者UTR

在缺氧情況下的活性表現 61表目錄表 1、 qRT-PCR及建構質體中所使用之引子 62表 2、 Translational efficiency計算方式。 63表 3、利用免疫沉澱法探討各目標基因與RBM4之間的作用的raw data 64表 4、利用免疫沉澱法觀察在各目標基因在經過缺氧處理後與RBM4結合之能力的raw data 65表 5、利用dual luciferase reporter assay觀察ALDOC、P4HA1和PLOD2三者UTR在缺氧情況下的活性表現的raw data 66